The Ulutas Medical Journal p-ISSN 2149-0430 e-ISSN 2149-388X

The Ulutas Medical Journal · ISSN 2149-0430 (印刷版), 2149-388X (在线版) · https://www.ulutasmedicaljournal.com/?mno=171894

原创论著 · 开放获取

Guajava Ameliorates 成人雄性微星鼠体内氯化铝触发的睾丸分裂

标题、摘要和全文为机器翻译。 英文原文

  • Abiodun Olalekan Oyeyemi1
  • Ayokunle Olawepo1
  • Vershima Kiekwe2
  1. Anatomy Department, Facultry of Basic Medical Sciences, College of Health Sciences, University of Ilorin, Ilorin Kwara State-Nigeria ROR
  2. Anatomy Department, Faculty of Basic Medical Sciences, College of Health Sciences, Benue State University Makurdi, Nigeria ROR
下载 PDF (1.4 MB) 引用方式 doi:10.5455/umj.20231003030105

摘要

导言:铝(Al)是一种三价配体,不会发生重复氧化变化.大量实验性证据表明,高浓度的铝会引起氧化应力;自由基代与抗氧化剂防御系统之间的不平衡.铝引起的氧化应激是导致男性生殖障碍的主要因素之一.木瓜树(Psidium guajava)作为拉丁美洲和撒哈拉以南非洲的原生植物广泛分布,其叶子被布置在民俗医学中,以管理几种疾病,例如:;腹泻、胃痛和肝病.进行这项研究是为了评估Pisidium guajava水提取物对铝(AlCl3)引起的睾丸损伤的影响.材料与方法:三十只成年雄威星鼠被随机分为六(6)组,每组五(5)只动物,用于本研究.A组从1日到14日以0.5毫升的正常盐水进行口服管理.B组仅得到氯化铝(AlCl3)的0.5毫升/千克体重,从第1天到第14天.C组从第1天到第14天获得Psidium gaujava叶提取物的0.5毫升/千克体重,D组从第1天到第14天获得Psidium guajava的0.5毫升/千克体重.E组从第1天到第14天获得氯化铝的0.5毫升/千克体重,从第15天到第28天获得Psidium guajava叶提取物的0.5毫升/千克体重.F组从第1天到第14天获得氯化铝的0.5毫升/千克体重,从第15天到第28天获得Psidium guajava叶提取物的0.5毫升/千克体重.行政是通过口腔管道进行的.结果:对氯化铝的口服对Wistar大鼠的睾丸组织形态产生不利影响,导致睾丸萎缩,导致半硝基输卵管内细菌细胞退化,与未经处理的动物相比,精子增生.结论:瓜瓦叶提取物扭转了氯化铝造成的破坏,恢复了扭曲的半硝基输卵管,并呈现出润滑剂带有密集包装的原生精子细胞.

关键词

全文

全文为机器翻译；以英文原文为准。 英文原文

导言

人类在生命的不同阶段受到许多环境污染物的污染,由于工业和环境污染而接触铝(Al),造成严重的生态危害。 (1)它被认为是环境中分布最广泛的金属。 据信,它是最普遍的金属,也是地壳中第三关键丰富的元素;只有氧气(49.5%)和硅(26%)比Al(8%)更常见。(2)在生物系统中,Al只存在微量,没有明确的生物功能,吸收不良,但在确实发生吸收时有效消除。 Al主要在骨骼,肝脏,睾丸,肾脏和大脑中描述,而其在组织和器官中的积累则导致功能障碍和毒性. (3)。 。 。

这一要素的广泛分布确保了在接触时对人类健康产生有害影响的可能性。 (4)甲型化合物被广泛用于药物中作为抗酸剂、疫苗、抗痢疾、磷酸结合剂和过敏剂注射 (5);食品添加剂和牙膏 (6);净水剂 (7)在制作各种家用炊具和储藏器械方面,它仍然是首选的金属。

Al造成小鼠、兔子和大鼠的各种认知障碍 (8, 9)流行病学研究表明, 阿尔在饮用水和阿尔茨海默病, 和各种人类和动物研究 已经涉及到学习 和记忆缺失后 阿尔接触 (10, 11)。阿尔Cl3个 可产生活性氧物种(ROS) (12)在另一个例子中,据报告,Al在小鼠的顶部、肝脏、胸腔和腹部叩头中引起毒性。 阿尔Cl3个- 诱发自由基,抑制血浆和重要血浆、肝脏、睾丸、肾脏、肺和兔子大脑中的抗氧化剂酶 (12, 13)。 。 。

抗氧化剂是保护细胞免受异生素、致癌物、药物和有毒剂的不利影响的物质。 (14)由于精子生成和莱迪格血清生成容易发生氧化应激反应,因此这一问题所特有的低氧张力可能是睾丸保护自身免受自由基介质损害的机制的重要组成部分。 (15)。 。 。

植物作为药物的使用早于人类的成文史. 尼日利亚拥有大量的药用植物。 因此,它为将传统医学与保健提供系统同步铺平了道路。 (16)使用草药治疗疾病在非工业化社会几乎是普遍的,而且往往比购买昂贵的现代药品更负担得起。 (17)。 。 。

瓜加瓦猪笼草 常见的 gu树,广泛分布于非洲和美国的原生植物,从墨西哥到巴西. 其叶子多年来被用于全球不同地区的民俗医学,用于管理各种疾病,并克服多种疾病,例如:风湿、腹泻、糖尿病、咳嗽和溃疡。 (18–21)据报告,该植物还具有抗微生物、止痛药和防炎特性。 (22, 23)。 。 。

材料和方法

伊洛林大学卫生科学学院伦理委员会根据全球批准的将动物用于科学研究的准则,对这项研究进行了伦理审批。

尼日利亚奥约州奥戈博莫索一家私营动物农场获得30只体重在160至250克的成年雄性维斯塔鼠,并在伊洛林大学卫生科学学院的动物院内饲养。 他们被安置在笼子里,有足够的空间鼓励在室温下在自然和黑暗循环下自由行动(12小时光和12小时暗)。 它们是在传统的商业标准老鼠小丸上培育出来的。 还向他们提供了水。 即时解放 并且允许在试验开始前14天达到试验条件。 动物间隙的重量是一直以来的。 通过每天清理废物来保持严格的卫生。

新鲜的叶子 P. 瓜贾瓦 是在尼日利亚夸拉州Ilorin郊区Tanke的一个私人农场获得的。 根据现有程序,实现了木薯叶的水提取 (24)在这一过程中,从伊洛林大学植物园收获了新鲜的石榴叶,用电搅拌机彻底洗净、空气干燥和粉碎。 得到的200克(200克)粉末在30±4时用600毫升蒸馏水浸泡72小时(单位:千美元)丙.. 混合物用Whatman 1号过滤纸进行筛和过滤,过滤液集中在45°C的受电调节的烤箱中。 最后,浓缩的原油提取物被干燥成固体质量。 测试样品是通过溶解固体质量与正常的盐碱来制备的,最终浓度为250毫克/千克体重(bw)和用于实验的500毫克/千克体重(bw)。 实验室级 AlCl3个 当地来源于尼日利亚伊洛林州Taiwo Road的丹尼斯和丹尼斯实验室。 其他试剂和化学品属于分析级。 三十个 (30) 成年雄性Wistar大鼠被随机分为6个 (6) 五人小组 (5) 每组动物。 A组用0.5毫升的普通盐水经口头管理ST 语 改为14编号 (b) B组的口服剂量为0.5毫升100毫克/千克体重3个 仅从 1ST 语 改为14编号 日报. C组口服0.5毫升250毫克/千克体重 帕西迪姆·加亚瓦 1的叶提取物ST 语 D组的口服剂量为0.5毫克/千克体重500毫克/千克 瓜叶 P 1的叶提取物ST 语 改为14编号 日,对E组进行口服,剂量为0.5毫升/千克体重100毫克/千克AlCl 3个 从1起ST 语 至14天,然后口服0.5毫升250毫克/千克体重 瓜叶 P 15年提取的叶片编号 至28日,对F组进行口服,剂量为0.5毫克/千克体重的AlCl3个从1起ST 语 改为14编号 日,然后口服0.5毫升500毫克/千克体重 瓜叶 P 15年提取的叶片编号 改为28国编号 日报. 所有行政都是通过口腔管道进行的。

A组到D组的所有老鼠都在15号牺牲编号 E组和F组在29日牺牲编号 实验日 在处理协议结束时,动物被肌肉内注射氯胺酮水氯化物(20毫克/千克),从而得到优生。 这些睾丸被鉴定、清除、清除脂肪,并使用敏感的分析加权平衡进行加权,放在Bouin的液体溶液中,用常规的血氧素和eosin进行组织光显微镜检查,用Ki67标记进行免疫学检查。

正确的睾丸被放置在0.25 mm的苏罗斯溶液中,比例为1:4. 每个组织被分别转移到含有冷苏罗斯溶液的玻璃同位素上,并使用电气同位素(Remi 8000 RPM)进行同位素化. 尚未断裂的细胞和细胞碎片在3000 RPM离心15分钟后被移除. 得到的超纳物质被用于酶估计(抗氧化酶水平). 通过使用Accu-Bind Microwell套件采用一种与酶相连的免疫素化验(ELISA)技术,从数量上测量了卵泡刺激激素(FSH)、润滑激素(LH)和睾丸激素的测定。 森林湖 CA 92630, 美国.

结果

口服水分提取法的效果 P. 瓜贾瓦 表1列出了由Alcl3引起的睾丸毒性的体重叶片。 实验动物的重量每星期测量一次,对整个实验获得的数据的分析表明,控制组和控制组的体重增加。 P. 瓜贾瓦 组群(250毫克/千克和500毫克/千克体重)。 该摘录显示,与控制组相比,所有剂量的体重没有重大变化(p<0.05)。 然而,这些动物口服了Alcl3个 14天记录的体重最低,在用木薯叶水生提取物(250毫克/千克和500毫克/千克体重)进行处理时发生逆转。 然而,逆转效应取决于剂量。

口服水分提取法的效果 P. 瓜贾瓦 阿尔克勒的睾丸重量3号诱导睾丸毒性见表2。 控制器的睾丸重量增加 P. 瓜贾瓦 组群(250和500毫克/千克)。 提取物显示,与控制相比,所有剂量的睾丸重量没有重大变化(p<0.05)。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 在14天的时间里记录了最低的睾丸重量,在用水生提取的木薯叶(250和500毫克/千克)进行治疗时,这一重量被逆转;然而,逆转效应取决于剂量。

生化评价

生殖激素、卵泡刺激激素(FSH)、润滑激素(LH)和睾丸酮(T)的定量是通过使用多克隆抗LH、抗FSH和抗T的竞争性酶免疫测定技术实现的。 根据制造商的规格,这些是在450nm的ELISA使用微板阅读器完成的。

FSH 语言

球刺激激素直接作用于半硝基输卵管,对刺激子宫内线粒体和线粒体DNA合成至关重要 (25). 口服水分提取水分法的效果 P. 瓜贾瓦 AlCl FSH 上的叶子3号图1列出了诱导睾丸毒性。 在控制组和 P. 瓜贾瓦 组群(250毫克/千克和500毫克/千克)。 该摘录显示,与控制相比,所有剂量的FSH没有重大变化(p<0.05)。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 在14天的时间里,记录了最低的卵泡刺激激素水平,在用水生提取的瓜叶(250毫克/千克和500毫克/千克)进行治疗时,该水平被逆转。 然而,逆转效应取决于剂量。

高尔夫

乳化激素是一种主要由前垂体腺分泌的腺苷激素. 它是一种甘油蛋白,用来调节来自莱迪格细胞间质细胞的睾酮生产. 对水中提取物进行口服的影响 P. 瓜贾瓦 阿尔克勒的润滑激素3号诱导的睾丸毒性见图2。 控制组和核糖体的激素LUTEIN化水平有所提高 P. 瓜贾瓦 组群(250毫克/千克和500毫克/千克)。 提取物显示,与控制相比,所有剂量的激素均未发生润滑变化。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 在14天的时间里,记录了最低的润滑激素,在用水生提取的 gu叶(250和500毫克/千克)进行治疗时,该激素被逆转;然而,逆转效应取决于剂量。

Table 1. 体重平均值的平均值和标准误差(SEM) P. 瓜贾瓦 氯化铝引起的Wistar大鼠睾丸毒性的提取物
表1:体重平均值(SEM)对P. guajava的影响对氯化铝引起的Wistar大鼠睾丸毒性的平均和标准误差
Table 2. 平均值(SEM)对 P. 瓜贾瓦 在 AlCl 的睾丸重量上提取叶片3个 Wistar大鼠的诱导毒性
表2: 平均值(SEM)对P. guajava效应的平均值和标准误差

舌头岛

睾酮(T)为C第19条 类固醇和最强 自然密闭和罗根。 在雄性中,它在间歇性莱迪格细胞中合成,并通过润滑激素调节. 它负责发展次级性特征. 口服水分提取法的效果 P. 瓜贾瓦 AlCl 的睾丸酮级叶片3号诱导睾丸毒性见图3。 控制组的睾酮含量和 P. 瓜贾瓦 组群(250和500毫克/千克)。 提取物显示,与控制相比,所有剂量的T水平没有变化。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 在14天的时间里记录了最低的睾丸酮,在用水生提取的木薯叶(250和500毫克/千克)进行治疗时,该酮被反转;然而,反转效应取决于剂量。

爆炸物处理

超氧化物二氧化物(SOD)呈现出第一道防超氧化物的防线. 它会消散 欧22-阳离子形成 O2个 和H类2个欧2个SOD 保护精子动物免受自发O的伤害2个 毒性和利皮过氧化 (26)有几份报告表明,AlCl3个 可能抑制SOD和CAT的活动 (27, 28). 口服水分提取水分法的效果 P. 瓜贾瓦 AlCl 的SOD活动叶片3号诱导睾丸毒性见图4。 控制组和 P. 瓜贾瓦 组群(250毫克/千克和500毫克/千克)。 该摘录表明,与控制相比,所有剂量的SOD没有变化。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 14天记录的最低SOD值,在用水生提取的木薯叶片(250毫克/千克和500毫克/千克)进行处理时,该数值被逆转;然而,逆转效应又是依赖剂量的。

玛达

Malondialdehyde(MDA)是一种著名的脂质过氧化指标,在Al暴露后在睾丸和偶氮化物中增加。 (29, 30)影响矿物新陈代谢分布可能导致脂质过氧化增加。 Al将钙、铁、锌、铜和镁等其他生物配体从其约束场地中移走的能力是Al产生有害影响的潜在目标。 (31). 口服水分提取法的效果 P. 瓜贾瓦 AlCl 的 MDA 活动的叶片3号图5列出了诱导睾丸毒性。 控制组的MDA水平和 P. 瓜贾瓦 组群(250毫克/千克和500毫克/千克)。 该摘录显示,与控制相比,所有剂量的MDA水平没有重大变化(p<0.05)。 然而,对AlCl进行口服的动物3个 14天记录的MDA活性水平最高,在用水生提取的木薯叶(250毫克/千克和500毫克/千克)进行处理时,该活性被逆转。 然而,逆转效应同样取决于剂量。

讨论情况

身体和睾丸重量观测

在密切观察期间,该类大鼠的正常盐碱量为0.5毫升,250毫克/千克,500毫克/千克B.W. 瓜叶 P 口服提取的叶子在14天的时间内显得正常且活性,而用氯化铝处理的组群一般只有14天的弱度,大约为5至10分钟,然后才能再次取出,这有助于减少饲料摄入量,并且与控制量相比,实际重量增量下降,250毫克/千克和500毫克/千克的溴化二苯醚。 瓜叶 P然而, 瓜叶 P- 怎么样?

图1:具有代表性的老鼠睾丸光电图,显示多种半硝基管(ST)的全景。 控制=正常盐碱,AlCl3=100mg/kg体重 AlCl3,PGE250=250mg/kg体重 Psidium guajava提取物和PGE500=500mg/kg体重 Psidium guajava提取物
Figure 1. 具有代表性的老鼠睾丸摄影机,揭示了多种半硝基管(ST)的全景. 控制=正常盐碱,AlCl3个ALCl = 100毫克/千克体重3个PGE250=250毫克/千克体重 瓜叶 P PGE500=500毫克/千克体重 瓜叶 P 提取 Control,PGE250,和PGE500以具有典型间歇空间的普通半尼氏管出现. AlCl 的半硝基管3个- 被处理的动物被曲折地包裹着非典型的间歇空间和不规则的润滑液凝结。 阿尔Cl3个+PGE250 和 AlCl3个+PGE500以包装的半niferous tutules呈现,具有典型的形态结构,类似于控制组中可以获得的东西:Hematoxylin和Eosin 污物×40放大.
图2:具有代表性的老鼠试验摄影图,详细显示半硝基管(ST)、半硝基管(L)的Lumen以及间歇空间(IS)。 控制=正常盐碱、AlCl3=100毫克/千克体重 AlCl3、PGE250=250毫克/千克体重
Figure 2. 具有代表性的老鼠实验摄影仪,揭示了对半硝基管(ST)、半硝基管(L)的Lumen以及间歇空间(IS)的详细看法。 控制=正常盐碱,AlCl3个ALCl = 100毫克/千克体重3个PGE250=250毫克/千克体重 瓜叶 P PGE500=500毫克/千克体重 瓜叶 P 提取 Control, PGE250, 和 PGE500 以异构的光子, 完整的玄武质膜, 以及典型的间歇空间, 没有睾丸退化的迹象. AlCl 的半硝基管3个 被处理的动物被高度编码,其中玄武质膜描述不严,露膜扩大,并扭曲了间歇结构。 阿尔Cl3个+PGE250 和 AlCl3个+PGE500在出现时带有有形态结构的三角排列的半硝基管,并平稳地勾勒出与控制组中可以获得的相似的间歇空间: Heamatoxylin
图3:具有代表性的Wistar测试摄影机,显示半硝基管(ST)、半硝基管(L)、精子细胞(SD)、原始精子细胞(PS)、辅助细胞、地下室膜(BM)和描绘百分点的间歇空间(IS)的功率放大
Figure 3. 具有代表性的Wistar睾丸的光电显微仪显示半阴性输精管(ST),半阴性输精管(L)的卢门(L),精子(SD),主精子细胞(PS),辅助细胞,地下室膜(BM)和描绘中心精子生成过程的间歇空间(IS). 控制=正常盐碱,AlCl3个ALCl = 100毫克/千克体重3个PGE250=250毫克/千克体重 瓜叶 P 提取物和PGE500=500毫克/千克体重 瓜叶 P 提取 Control,PGE250,和PGE500在地下室膜中呈现人口稠密的原始精子细胞和辅助细胞. 鲁门被密集地包裹着成熟的精子细胞. 地下室的膜有很好的划线,相邻的间质由完整的间质细胞组成. AlCl 的半硝基管3个- 在这种高功率的放大下被治疗的动物 目前的输卵管退化 与光滑
图4:具有代表性的大鼠睾丸光谱仪,显示多种半硝基管(ST)的全景。 控制=正常盐碱,AlCl3=100毫克/千克体重 AlCl3,PGE250=250毫克/千克体重 Psidium guajava提取物,PGE500=500毫克/千克体重 Psidium guajava exter
Figure 4. 具有代表性的老鼠睾丸摄影机,揭示了多种半硝基管(ST)的全景. 控制=正常盐碱, AlCl3个ALCl = 100毫克/千克体重3个PGE250=250毫克/千克体重 瓜叶 P 提取物,PGE500=500毫克/千克体重 瓜叶 P 提取 阿尔Cl3个- 相对于显示Ki67表情的其他实验组而言,经处理的大鼠的污渍强度较差。 在x40放大时,对石蜡嵌入的组织进行免疫污渍.
图5:具有代表性的老鼠睾丸摄影机,显示多种半硝基管(ST)的全景。 控制=正常盐碱、AlCl3=100毫克/千克体重、PGE250=250毫克/千克体重、PGE500=500毫克/千克体重
Figure 5. 具有代表性的老鼠睾丸摄影机,揭示了多种半硝基管(ST)的全景. 控制=正常盐碱, AlCl3个=100毫克/千克体重3个PGE250=250毫克/千克体重 瓜叶 P 提取物和PGE500=500毫克/千克体重 瓜叶 P 提取 阿尔Cl3个- 相对于显示Ki67表情的其他实验组而言,经处理的大鼠的污渍强度较差。 在x100放大时,对石蜡嵌入组织进行免疫污渍.

血清FSH级

3个

0 个 A级

集团

页:1

血清LH级

第8条

6 I/mI 4(mU LH 2)

0 个 A级

集团

页:1

血清测试酮水平

I)/mg 6 n e(无4 er st o 2试验)

集团

页:1

行动

0.25 (中文(简体) ).

页:1

页:1

(uD0.10) (单位:千美元)

欧

页:1

集团

页:1

玛达活动

零点25分

(一) 0.0020

页:1

Mou

(A/0.010) (单位:千美元)

0.0005马镑

0.000美元 (单位:千美元) A级

集团

页:1

经过处理的大鼠在实验中都是正常的,它们描绘出水中提取的石榴叶会改善氯化铝造成的不活动性。 在经过铝处理的大鼠中观察到的不活动性可能是由于诱发氧化应力。 氧化应力被确认为铝接触的主要作用方式,因为在几种细胞的体外以及肝脏、肾脏、大脑、肺和实验动物的睾丸等软组织中都观察到了这种作用方式。 (7)发现Guava叶具有抗氧化剂特性,可以减轻AlCl引起的效应。3个,因为所有摄取了250毫克/千克和500毫克/千克体重的水生提取物的组群似乎都很活跃和健康。 此外,睾丸损伤对体重的最终影响表明其对健康的毒性 (32)然而,关于睾丸损伤与体重变化之间的关系,有相互矛盾的报告。 在本次研究中,实验动物的重量每周测量一次. 对整个试验中监测的动物体重数据的分析表明,所有实验组的动物都增加了体重。 增重最多的是控制组,其增重率为103.33/3.71。 以250毫克/千克和500毫克/千克溴化二苯并呋喃为单位的组别中观察到增加 瓜叶 P 叶片萃取量,提取量分别上升100.67±8.19和101±3。 在250毫克/千克和500毫克/千克溴化二苯并呋喃的处理组中也观察到类似的增加。 瓜叶 P 浓度100毫克/千克后提取的叶子3个 14天时间。 体重的最后一次增加是给100毫克/千克的Alcl。3个 只有14天时间 然而,对Alcl的口服动物 3个 只有14天记录的体重增量最低;这一结果与以往的研究结果相吻合,以往的研究结果报告说,在对大鼠接收AlCl的观察中,有3个月的时间。3个水和食物摄入量减少,暂时性痢疾减少,导致动物最终体积低于控制 (33)低体重在用水生提取的木薯叶(250毫克/千克和500毫克/千克体重)进行处理时被逆转;然而,逆转效应取决于剂量,所增加的重量没有变化。 这可归因于 瓜叶 P 叶萃取物产生其抗氧化作用;因此,它降低了AlCl的作用。3个 在重量。 这一结果证实了另一项研究的结论,该研究还报告,当服用250毫克/千克、500毫克/千克和750毫克/千克时,大鼠的体重会增加。 (34)口述管理 AlCl3个 睾丸重量明显减少,体重为100毫克/千克。 与控制相比,在14天的时间里,这些组群的剂量分别为250毫克/千克体重和500毫克/千克体重。 水生提取 gu叶. 这些结果与另一项研究相一致,其中在AlCl之后,绝对和相对试验量和基本睾丸重量下降。3个 报告摄入量 (35) 生殖器官重量的下降可能是由于睾丸酮的减少,而睾丸酮的减少可能是由于在老鼠睾丸中诱发的氧化损伤。 睾丸重量的下降在用水提取的榴叶(250和500毫克/千克)进行治疗时被扭转;然而,逆转效应取决于剂量。 这些结论与另一项独立研究同步进行,该研究的口服药量为250毫克/千克和500毫克/千克水生提取的木薯叶增加体重 (36)。 。 。

荷尔蒙和生化观测

生殖激素的复杂功能至关重要,并与精子生成和精子发育的温和密切相关. 由外侧垂体的Gonadoprophin细胞共同保密,LH和FSH触发T由雄性生殖系统中的睾丸的莱迪格细胞释放,这在精子质量发生重大扭曲的假想中为激素事件提供了便捷的指针.

本研究的结果表明,经处理的大鼠使用AlCl。3个 血清FSH、LH和睾丸酮的剂量为100毫克/千克,为期14天,与仅用250毫克/千克和500毫克/千克番薯叶片的对照组和口服组相比,在1-3条图中都明显减少。 它还显示,与以前服用的水藻叶不同剂量的组别相比,已明显减少。3个 口头的 阿尔Cl3个 会对动物模型中的生殖性能产生重大不利影响 (38)这种效应可以集中、外围或兼而有之。 铝是一种对电压敏感的钙通道阻塞器,可影响神经递质释放 (39). 与先前报告一致的结果,即AlCl3可在兔子睾丸中产生反应性氧物种 (12). 另一项调查结果同样表明;小鼠接触铝会降低血浆和睾丸睾酮 (9)如本研究所示,减少LH释放会导致睾酮血清浓度下降。 睾丸酮水平的下降最终将反映在外围性器官的功能中,包括头骨和睾丸 (40)在用水生提取的石榴叶(250和500毫克/千克体重)处理时,LH、FSH和睾丸酮水平的下降被逆转。 然而,逆转效应取决于剂量。 这一调查结果与先前的一项调查相一致,该调查显示,在亚得里亚米辛诱发的睾丸毒性中,木薯叶提取物会提高精液质量。 (41) Malondialdehyde(MDA)是一种著名的脂质过氧化指数,在Al暴露后在睾丸和偶氮化物中增加。 (29, 30)影响矿物新陈代谢分布可能会增加脂质过氧化。 阿尔将钙、铁、锌、铜和镁等其他生物配体从其约束地点转移出去的能力是阿尔造成不利影响的潜在目标。 (31)初步发现雄性小鼠腹膜内注入氯化物两周,大大加重了睾丸Al负担,打破了导致脂质过氧化增加的基本矿物Zn、Cu和Fe的平衡,并减少了睾丸ACE(特异性血管素转化酶)活性。 Al离子可能逐渐取代Zn从诱导的MT或MT类蛋白质中脱落,并释放Zn能够将更多的th蛋白合成,进一步结合Al和其他金属,包括铜. 报告显示,铝对铁的顺位性干扰,严重妨碍细胞代谢。 铝还有利于生成氧化性环境,因为它会生成一个实验室铁池并与膜脂相互作用. (9)在这项研究中,观察到口服100毫克/千克体重的睾丸SOD活性3个 更低调 同时,与控制相比,多氯二苯并呋喃的含量更高,只有250毫克/千克体重和500毫克/千克体重的水中提取的木薯叶。 经口服Alcl后,该组得到250毫克/千克和500毫克/千克体重的治疗3个 与AlCl相比,SOD水平和MDA水平也有所降低3号 但是,增加取决于剂量。 这些调查结果与先前一项研究表明Al可以减少抗氧化剂和增加脂过氧化的研究结果相一致。 (42)先前的另一项研究还报告了Al引起的氧化性损害以及Al在诱发氧化性应激和脂质过氧化后跨越血试屏障的能力,从而破坏了睾丸的生物膜。 (43)。 。 。

历史结构观测

甲醇的睾丸毒性3个 经睾丸组织免疫学观察进一步证实. 这些免疫学观测显示,与标准睾丸结构相比,半肠杆菌内细菌细胞的分泌导致睾丸萎缩、润滑液扩大和正常的超人成熟性扭曲,在控制组中观察到的有明显有序地安排了腺细胞和Sertoli细胞,这些组群还服用了250毫克/千克和500毫克/千克的水提取的榴叶。 用100毫克/千克体重处理的试验呈现强烈的坏死、精子生成干扰、精子在润滑液中缺失,半阴性输卵管的幼虫上皮退化。 这些调查结果与先前的一项研究获得的数据一致,该研究显示,在AlCl3-经治疗的人群中,组织病理学检查显示,睾丸明显改变,导致半硝基输卵管出现明显损伤。 (30)此外,其他有文件记载的研究结果报告,对氟化钠和AlCl施用3个 30d在月球上造成无组织上皮细胞残块,并降低精子密度 (44)Ki67的免疫-史迹污迹也表明3个 受治疗的组群的污损程度不高,从而显示细胞扩散比控制和受治疗的组群少。

用水中提取物处理 瓜叶 P (250和500毫克/千克体重)表明组织病理学特征急剧减少(睾丸萎缩和血管内消蚀),并表明控制组中有大量免疫阳性细胞。

结论

人工智能的口头管理3个 扭曲了Wistar大鼠的睾丸组织形态,导致睾丸萎缩,与半硝基输卵管内细菌细胞的降解有关,与未经处理的动物相比,精子含量较少,从而扩大了Lumen。 水中提取出的石榴叶能够扭转 AlCl 造成的损害3个倒转扭曲的半阴性输卵管 并呈现有密集的原始精子细胞的润滑剂 由 AlCl 引起的减重逆转3个 此外,还建立了这一机制。

声明

作者贡献（CRediT）
所有作者对全部 14 项 CRediT 角色贡献均等（Conceptualization, Data curation, Formal analysis, Funding acquisition, Investigation, Methodology, Project administration, Resources, Software, Supervision, Validation, Visualization, Writing – original draft, Writing – review & editing）。
资助

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利益冲突
There are no conflicts of interest.
伦理批准
Ethical approval for the study was given by the ethical committee of the College of Health Sciences, University of Ilorin, in line with the globally approved guidelines for the use of animals for scientific studies.
数据可用性
A data availability statement was not reported in the published version of this article.

参考文献 (44)

44 条参考文献中有 32 条已链接 DOI。

  1. McLachlan RI, O’Donnell L, Meachem SJ, Stanton PG, De-Kretser DM, Pratis K, Robertson DM. Identification of specific sites of hormonal regulation in spermatogenesis in rats, monkeys and man. Recent Prog Horm Res. 2002;57:149-179. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  2. Kumar V, Gill KD. Aluminium neurotoxicity: neurobehavioural and oxidative aspects. Arch Toxicol. 2009;83:965-978. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  3. Rahimzadeh MR, Rahimzadeh RM, Kazemi S, Amiri RJ, Pirzadeh M, Moghadamnia AA. Aluminium Poisoning with Emphasis on Its Mechanism and Treatment of Intoxication. Emerg Med Int. 2022:1480553. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  4. Zhang K, Zhou Q. Toxic effects of Al-based coagulants on Brassica chinensis and Raphanus sativus growing in acid and neutral conditions. Environ Toxicol. 2005;20(2):179-87. PubMed Google Scholar
  5. Lione A. Aluminium toxicity and the aluminium containing medication. J Pharmacol Ther. 1985;29:255-285. PubMed Google Scholar
  6. Abbasali KM, Zhila T, Farshad N. Developmental Toxicity of aluminium from High Doses of AlCl3 in Mice. J Appl Res. 2005;5:575-579. PubMed Google Scholar
  7. Newairy AS, Salama AF, Hussien HM, Yousef MI. Propolis alleviate aluminium-induced lipid peroxidation and biochemical parameters in male rats. Food Chem Toxicol. 2009;47(6):1093-8. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  8. Bilkei- Gorzo A. Neurotoxic effect of enteral Aluminium. Food Chem Toxicol. 1993;31:357-361. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  9. Guo C, Huang C, Chen S, Wang HG. Serum and testicular testosterone and nitric oxide products in aluminum-treated mice. Environ Toxicol Pharmacol. 2001;10:53-60. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  10. Exley C. The aluminium-amyloid cascade hypothesis and Alzheimer’s disease aluminium and β-amyloid. Alzheimer’s Dis. 2005;38:225-234. DOI: 10.1007/0-387-23265-11. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  11. Buraimoh AA, Ojo SA, Hambolu JO, Adebisi SS. Histological study of the effects of aluminium chloride exposure on the testis of Wistar rats. Am Int J Contemp Res. 2012;2:114-122. PubMed Google Scholar
  12. Yousef MI. Aluminium- induced changes in hemato-biochemical parameters, lipid peroxidation and enzyme activities of male rabbits: protective role of ascorbic acid. Toxicology. 2004;199:47-57. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  13. Yousef MI, El-Morsy AMA, Hassan MS. Aluminium-induced deterioration in reproductive performance and seminal plasma biochemistry of male rabbits: protective role of ascorbic acid. Toxicology. 2005;215:97-107. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  14. Kurutas EB. The importance of antioxidants which play the role in cellular response against oxidative/nitrosative stress: current state. Nutr J. 2016;15:71. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  15. Aitken RJ, Roman SD. Antioxidant systems and oxidative stress in the testes. Oxid Med Cell Longev. 2008;1(1):15-24. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  16. Ogbadoyi EO, Abdulganiy AO, Adama TZ, Okogun JI. In vivo trypanocidal activity of Annona senegalensis Pers. leaf extract against Trypanosoma brucei brucei. J Ethnopharmacol. 2007;112(1):85-89. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  17. Lifongo LL, Simoben CV, Ntie-Kang F, Babiaka SB, Judson NP. A Bioactivity Versus Ethnobotanical Survey of Medicinal Plants from Nigeria, West Africa. Nat Prod Bioprospect. 2014;4:1-19. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  18. Gutiérrez RMP, Mitchell S, Solis RV. Psidium guajava: A review of its traditional uses, phytochemistry and pharmacology. J Ethnopharmacol. 2008;117:1-27. 226 77 Pisidium Guajava Ameliorates Testicular Distortions Kiekwe et al. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  19. Sanda KA, Grema HA, Geidam YA, Bukar -Kolo YM. Pharmacological aspects of P. guajava: An update. Int J Pharmacol. 2011;7:316-324. PubMed Google Scholar
  20. Shruthi SD, Roshan A, Sharma S, Sunita S. A review on the medicinal plant Psidium guajava Linn. (Myrtaceae). J Drug Deliv Ther. 2013;3:162-168. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  21. Morais- Braga MFB, Carneiro JNP, Machado AJT, Dos Santos ATL, Sales DL, Lima LF, Figueredo FG, Coutinho HDM. Psidium guajava L., from ethnobiology to scientific evaluation: Elucidating bioactivity against pathogenic microorganisms. J Ethnopharmacol. 2016;194:1140–1152. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  22. Aarti R, Vikas M, Nitin S. Phytochemical screening, antimicrobial, antioxidant and cytotoxic potential of different extracts of Psidium guajava leaves. Int J Plant Res Biotechnol. 2020. PubMed Google Scholar
  23. Olajide OA, Awe SO, Makinde JM. Pharmacological studies on the leaf of Psidium guajava. Fitoterapia. 1999;70:25-31. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  24. Ofodile LN, Nwakanma CNM, Mordi M, Ademolu O, Ezimoke I, Owoso J. Genotoxic and antimicrobial studies of the leaves of Psidium guajava. Eurasia J Biosci. 2013;7:60-68. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  25. Oduwole OO, Peltoketo H, Huhtaniemi IT. Role of Follicle-Stimulating Hormone in Spermatogenesis. Front Endocrinol. 2018;9:763. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  26. Alvarez JG, Touchstone JC, Blasco L, Storey BT. Spontaneous lipid peroxidation and production of hydrogen peroxide and superoxide in human spermatozoa: superoxide dismutase as a major enzyme protectant against oxygen toxicity. J Androl. 1987;8:336-348. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  27. Al-Hashem FH. Camel’s Milk Alleviates Oxidative Stress and Lipid Peroxidation Induced by Chronic Aluminium Chloride Exposure in Rat’s Testes. Am J Appl Sci. 2009;6:1868-1875. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  28. Anand P, Nehru B. Alterations in glutathione system in adult and pup rat brains following chronic aluminium exposure. Indian J Occup Environ Med. 2006;10:128-132. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  29. Yousef MI, Kamel KI, El-Gvendi MI, El-Demerdash FM. An in vitro study on reproductive toxicity of aluminium chloride on rabbit sperm: the protective role of some antioxidants. Toxicology. 2007;239(3):213-223. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  30. Hala AH, Khattab I, Abdallaha ZA, Kamel GM. Grape seed extract alleviate reproductive toxicity caused by aluminium chloride in male rats. J Am Sci. 2010;6:1200-1209. PubMed Google Scholar
  31. Yokel RA. Brain uptake, retention, and efflux of aluminum and manganese. Environ Health Perspect. 2002;110:699-704. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  32. Ebong PE, Eyong EU, Eteng MU, Ukwe CN. Influence of chronic administration of chloroquine on Leydig cell integrity and testosterone profile of albino Wistar rats. Afr J Rep Heath. 1999;3(2):97-107. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  33. Kowalczyk E, Kopff A, Kędziora J, Błaszczyk J, Kopff M, Niedworok J, Fijałkowski P. Effect of Long-Term Aluminium Chloride Intoxication on Selected Biochemical Parameters and Oxidative-Antioxidative Balance in Experimental Animals. Pol J Environ Stud. 2004;13(1):41-43. PubMed Google Scholar
  34. Udemezue OO, Ukoha U, Ezejindu DN, Okafor JI, Obilor AD. The histological effects of guava leaf aqueous extract on kidneys of adult wistar rats. Int J Res Med Health Sci. 2014;4(3):ISSN 2307-2083. PubMed Google Scholar
  35. Bataineh H, Al-Hamood MH, Elbetieha AM. Assessment of aggression, sexual behavior and fertility in adult male rat following long-term ingestion of four industrial metals salts. Hum Exp Toxicol. 1998;17:570-576. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  36. Choudhury S, Sinha MP. Effects of Psidium guajava Aqueous Extract on Testosterone and Serum Lipid Profile of Albino Rats. Middle-East J Sci Res. 2014;21(10):1893-1897. DOI: 10.5829/idosi.mejsr.2014.21.10.84298. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  37. Vigeh M, Smith DR, Hsu PC. How does lead induce male infertility? Iran J Reprod Med. 2011;9:1-8. PubMed Google Scholar
  38. Yousef MI, El-Morsy AMA, Hassan MS. Aluminium-induced deterioration in reproductive performance and seminal plasma biochemistry of male rabbits: Protective role of ascorbic acid. Toxicology. 2005. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  39. Yousef MI, Salama AF. Propolis protection from reproductive toxicity caused by aluminium chloride in male rats. Food Chem Toxicol. 2009;47:1168–1175. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  40. Shahraki MR, Palan MJ. Effect of Aluminium on Testosterone Hormones in Male Rat. J Med Sci. 2006;6:296-299. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  41. Ola-Davies OE, Oloye AA, Oyeyemi MO. Ameliorating effects of guava (psidium guajava) extract on adriamycin induced reproductive toxicities. Folia Veterinaria. 2015;59(3):153-158. PubMed Google Scholar
  42. Anane R, Creppy EE. Lipid peroxidation as pathway of aluminium cytotoxicity in human skin fibroblast cultures: Prevention by superoxide dismutase plus catalase and vitamins E and C. Hum Exp Toxicol. 2001;20:477–481. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  43. Kutlubay R, Oguz EO, Can B, Guven MC, Sinik Z, Tuncay OL. Vitamin E protection from testicular damage caused by intraperitoneal aluminium. Int J Toxicol. 2007;26:297-306. DOI Crossref PubMed Google Scholar
  44. Chinoy NJ, Momin R, Jhala DD. Fluoride and aluminium induced toxicity in mice epididymis and its mitigation by vitamin C. Fluoride. 2005;38:115–121. PubMed Google Scholar

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如何引用本文

Oyeyemi AO, Olawepo A, Kiekwe V. Pisidium Guajava Ameliorates Testicular Distortions Triggered by Aluminium Chloride in Adult Male Wistar Rats. Ulutas Med J. 2023;9(4):213-226. doi:10.5455/umj.20231003030105

Oyeyemi, A. O., Olawepo, A., & Kiekwe, V. (2023). Pisidium Guajava Ameliorates Testicular Distortions Triggered by Aluminium Chloride in Adult Male Wistar Rats. The Ulutas Medical Journal, 9(4), 213–226. https://doi.org/10.5455/umj.20231003030105

Oyeyemi, A.O., Olawepo, A. and Kiekwe, V. (2023) 'Pisidium Guajava Ameliorates Testicular Distortions Triggered by Aluminium Chloride in Adult Male Wistar Rats', The Ulutas Medical Journal, 9(4), pp. 213–226. doi: 10.5455/umj.20231003030105.

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