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原创论著 · 开放获取

尼泊尔Bhairahawa的皮肤病:皮肤病物种的流行和抗药性模式

标题、摘要和全文为机器翻译。 英文原文

  • Subhash Lal Karn1
  • Ajay Gurung1
  • Amit Kumar Shrivastava2
  • Sulochana Khatiwada Poudel1
  • Shristi Raut Adhikari1
  • Chandra Mohan Sah3
  1. Department of Microbiology, Universal College of Medical Sciences, Bhairahawa, Nepal ROR
  2. Department of Pharmacology, Universal College of Medical Sciences, Bhairahawa, Nepal ROR
  3. Department of Dermatology, Universal College of Medical Sciences, Bhairahawa, Nepal ROR
下载 PDF (357.1 KB) 引用方式 doi:10.5455/umj.20201208055254

摘要

导言:德马托菌(Dermatophytosis)是由脱菌菌菌对毛发,指甲和皮肤等已化组织进行的殖民. 它们被视为一个重要的公共卫生问题。 该研究旨在隔离,识别和检测各种脱氧核糖核酸类动物与临床诊断的脱氧核糖核酸病例的体外抗风敏感性模式. 材料和方法:本研究征集了160名不同年龄组的男女病人和经临床诊断患有脱氧核糖核酸的病人。 标本包括皮肤鳞片、拔发和钉子剪辑。 鉴定和隔离是通过微观检查、培养和生化分析进行的。 结果:男性(60.62%)的皮肤病比女性(39.37%)更常见。 Tinea Corpororis(31.25%)是最常见的临床介绍,其次是Tineacuthi(25%)。 Trichophyton rubrum(36.19%)是最常见的隔离物,其次是 Trichophyton mentagrophytes (15.23%). 在使用的四种抗风药中,发现氟丙烯抗药性最强,而Itraconazole是最有效的药物. 结论: 脱菌感染的流行病学可能随时间而改变. 抗肿瘤易感性检测将有助于临床医生启动迅速和适当的抗肿瘤疗法,并防止出现抗药性.

关键词

全文

全文为机器翻译；以英文原文为准。 英文原文

导言

红蛋白是可导致毛发、皮肤和指甲等白蛋白质组织疾病 (1). 这个解毒小组的成员包括: 特里乔菲顿, (中文). 微粒 和 蜘蛛侠 (2). 根据水库和输电途径,脱氧核糖核酸可能具有人类(人类)、动物(动物)或地球(土壤)起源。 这些生物根据受影响的身体地点命名:Tinea capitis(头),T. corporis(trunk),T. craris(perianal 区域),T. pedis(脚和数字区域),T. unguium(蜗牛) (3)最常见的病原体是 三合金卢布, (中文). T. 语法, (中文). T. 数字化, (中文). T. 扁桃兰,以及 微孢子罐头。 。 。 T. 卢布 是诊所最常被隔离的药剂 (1)尼泊尔是一个气候、社会经济地位、宗教和习俗差异很大的国家。 在发展中国家,除炎热潮湿的气候条件、卫生条件低、用水条件差、接触过度拥挤之外,还具有严重的病原化作用。 (4–9)。 。 。

脱菌治疗方案既具有系统性,也具有系统性。 但是在一段时间内,脱马托植物也同时对单药物和多种药物发展出抗药性. 全世界进行的研究表明,脱氧基植物的抗药性并不罕见。 (10, 11)由于高温和湿度增加,特别是尼泊尔西部地形和丘陵地区的脱菌和其他真菌感染病例增加。 由于一段时间以来观察到的对通常用于治疗的抗菌药物,即氟丙烯、三氯硝基苯和三氯硝基甲苯的抗药性有所增加,因此显然需要检测脱菌素的抗菌易感性。 最近,CLSI(临床和实验室标准研究所)批准了一种用于对模具进行抗菌易感性测试的微分质稀释法,但这些测试十分繁琐,难以在常规的实验室设置中进行. 基于agar的圆盘扩散法(ABDD)是确定去甲虫抗菌易感性的简单方法,但有关这些方法的数据很少,没有标准化。 (2, 12, 13)由于药物的体外和体外作用之间不确定的相关性,在指导使用抗菌药物疗法时,体外抗菌素易感性测试的应用受到限制。 (2, 14)。 。 。

这项研究计划确定尼泊尔Bhairahawa的脱氧核糖核酸感染的流行率,以及已恢复的脱氧核糖核酸物种对抗风药的抗药性。 迄今为止,皮肤真菌感染得到实证治疗,我们地区不建议使用真菌培养和敏感度;因此,关于皮肤感染和抗药性的数据很少。 因此,计划进行这项研究是为了找出同样的情况。

材料和方法

2019年3月至2019年10月在万国医学院教学医院(UCMS-TH)Bhairahawa进行医院远景观测研究.

道德声明

在样本收集之前,道德审批取自UCMS-TH的机构审查委员会(IRC)(I.R.C.Reg. No. UCMS/IRC 036/019)。 经知情同意后,本研究共招募了160名不同年龄组的男女患者,接受皮肤病门诊和临床诊断的脱菌病治疗。 研究不包括表面感染、意外和外科病例的病人以及已经接受过抗风治疗的病人。 详细记录了选定病例的历史,包括姓名、年龄、性别、地址、病期和其他投诉。 所有临床诊断的160例病例都接受了神学研究. 标本包括皮肤鳞片,毛发和指甲. 病情现场用70%的酒精进行清理,用不育的纸叠收集样本,并贴有患者细节标签. 所有样本都直接受到显微镜检查和培养。 氢氧化钾(KOH)在显微镜下直接观测到一部分标本,其皮肤用10%,头发和指甲样品用40%。 样品的另一部分在Sabouraud用氯苯甲醇(0.05毫克/毫升)和环己酰胺(0.5毫克/毫升)的脱氧糖的斜面上接种。 文化管每周检查三次,以显示生长,文化孵化1个月,然后丢弃为阴性。 根据物种水平的聚落形态、LCPCB的微缩特性、Lacto Phenol棉蓝(LPCB)挂载和尿液试验,对生长的培养进行了评价。 LPCB是从印度孟买Hi-Media实验室Pvt.有限公司获得的. 如Nweze等人所描述,这些隔离物在研究使用抗菌药的抗菌药的敏感性模式时,受到基于agar的圆盘扩散方法的影响。 (12) A. 与Prabhat Kiran Khatri等人的合作(15) 28岁时在马铃薯上孵化0 个C用来加强1周的喷发. 生长后,圆锥虫在无菌盐碱中收获,圆锥体悬浮调整到1.0×10之间.6个 在MHA牌照上申请,之后,该牌照于28时孵化。0 个 C5 -7天时间

三毛毛蕨 ATCC 9533和 三合金卢布 ATCC 28188种菌株成为控制剂. 聚居地生长后,圆盘周围的抑制区用毫米测量,并记录为敏感,中间或耐受. (9, 12, 13)此外,还试验了含有真菌疫苗和无抗菌盘的控制板。

所有来自病例的数据都输入了MS Excel(微软办公室2018),然后通过社会服务统计包(SPSS)对窗口版本进行分析;SPSS 22, Inc., Chicago, IL. 所有数据均按百分比表示。

结果

在160例临床诊断的脱菌病病例中,男性(60.62%)比女性(39.37%)受影响更大,男性:女性比率1.54:1。 大多数患者属于15-29岁年龄组(33.75%),其次是30-44岁(26.87%),如表1所示。 受影响病人大多社会经济地位低下,从事体力活体工作,如体力劳动者、农民、微型木匠的孢子/微粒、裁缝、家佣等。

第5x10号决定6个 用细胞计血细胞计数计数(Neubauer室) (16)4种抗风药被检测为脱菌素隔离. 从HiMedia Laboratory Pvt. Ltd获得以下商业上可获得的抗风药., (中文). 印度孟买; fluconazole(25 μg), Itraconazole(10 μg)和ketoconazole(10 μg). 木勒·欣顿·阿加尔(MHA)在三个方向上均匀排列,无菌棉片浸入标准化的接种暂停。 被允许干燥当时的抗菌盘的是Tinea Corpororis(31.25%),这是最常见的临床表现,其次是Tineacookti(25%)和Tinea capitis(14.37%)。 与女性相比,Tinea公司和Tineacooki的男性发病率较高,分别为27人(16.87人)。百分比(%)),第22(13.75)页百分比(%)分别见表2。

Table 1. 按年龄和性别分列的病人分布情况
表1:按年龄和性别分列的患者分布情况
Table 2. 临床型的脱氧核糖核酸的分布
表 2: 临床类型的脱氧血压分布

在所处理的160个样本中,130个(81.3%)为KOH山体阳性,105个(65.6%)为培养阳性。 在130个KOH阳性样本中,102个(63.8%)为KOH阳性和文化阳性,其余为文化阴性,见表3。

Table 3. 通过直接显微镜(KOH Mount)获得的结果与文化之间的关联
表3:通过直接显微镜(KOH Mount)和培养结果之间的关联

来自Tinea craris患者的样本导致100%的KOH偏振率,其次是Tinea capitis病例的样本,显示为78.26%的KOH偏振率。 在Tinea corpororis(74%)的案例中,文化积极性最高,其次是Tineacuti(70%)和Tinea barbae(61.5%)。 三合金卢布 (36.2%)是最普遍的隔离,其次是 三毛毛蕨(15.2%),三磷基ton (13.3%)和 双鱼座 (12.4%) (中文(简体) ). 三合金卢布 是从38种临床类型的脱氧核糖核酸分离出来的最常见的脱氧核糖核酸。 所有四个孤立的脱马托生物种都从Tinea Corpororis中恢复,这是表4中最常用的临床介绍.

抗菌素易感性测试显示,伊拉康亚醇是最敏感的抗菌剂,而ketoconazole最不敏感. 在离子体隔离中 奥杜伊尼先生 显示对Itraconazole100%的敏感度,然后 T. 卢布 (84.21%)而敏感度最低的是 M. 坎尼斯语 (55.56%). T. 红素 表现出68.75%的对氟丙烯的敏感性。 同样, T. violaceum (英语). 表现出最高的灵敏度,即76.92%的抗酮浓度,随后是 T. 扁桃兰 (71.43%)和 T. 红素 (62.5%),见表5。

图1:皮肤病感染的临床图片。 A(显示中央清空的红斑的废墟的Tineacudi)、B(带有锡亚公司前方边缘的Annular红斑的废墟)、C(显示边缘的白斑和环状的Tinea capitis)、D(D)
Figure 1. 皮肤病感染临床图片. A(显示中央清理的过敏性废墟的Tineacudi)、B(带有尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖端尖 E(Tinea barbae在胡须皮肤上出现过度的废品损伤);F(Tinea crris with
Table 4. 临床演示与孤立的脱马生虫之间的关联
表4:临床演示与孤立的脱马生虫之间的关联
Table 5. 孤立的脱氧基植物的抗菌易感模式
表5:孤立的脱氧基植物的抗菌易感模式

讨论情况

确定负责脱菌的物种及其灵敏度模式,对流行病学和治疗观点都非常重要。 我们的研究地点为热带气候,湿度高,气温高,有利于真菌的生长,导致脱马生理学. 在我们目前的研究中,约有33.75%的脱马托血栓与15-29岁年龄组的病人隔离。 我们的结果和其他研究相似 (17–20) 他们也报告青年感染率较高。 发病率较高的主要原因是该地区的物理活动,湿度高,气温高. 这导致了适当的湿条件,使脱马托植物生长. 在这项研究中,160名病人中,97名(60.62%)是男性,63名(39.37%)是女性,男女比例为1.54:1。 南亚许多地方报告男性占主导地位 (21–23)男性中脱氧基植物的高流行率是由于与社会经常互动。

不同文献研究中,主要临床表现的脱马生理学差异很大. 在这项研究中,Tinea公司是占31.25%的最主要临床表现。 我们的调查结果符合Balakumar S等人的研究, (24) 他还报告说,Tinea公司是临床诊断的主流。 Tinea公司的高比率可归因于其症状性(pruritus)导致患者寻求医疗建议 (5)Hemendra Kumar Sharma等人的研究, (25) 显示 T 作为主要的临床诊断。 临床上观察到的这种变异是由于气候条件、生计、职业类型、职业类型、病原体和宿主关系各不相同。 在研究中,在160个临床样本中,130个(81.25%)样本通过KOH Mount直接显微镜检测呈阳性,105个(65.62%)样本为培养阳性. 在130个KOH阳性标本中,102个(63.75%)标本为KOH阳性和培养阳性,其余28个(17.5%)为培养阴性. 本研究的直接显微镜和培养结果与Basak P等人的研究相对一致。 (26) KOH阳性占71.1%,文化阳性占59.8%,Dhyaneswari GP等人, (27) (72.6%的KOH阳性)和Mahale RP等人, (28) (61.01%的文化为阳性). KOH正极率和培养正极率有区别 这是因为在直接显微镜下发现了真菌元素 但样本在培养上没有增长 可能是由于各种因素 诸如收集的 含有死真菌的样本不满意 (29, 30) 。在本研究中,有些标本在直接显微镜下看到时没有显示任何真菌元素,而是在培养上显示出生长. 这可能是由于存在在直接微镜检查中缺失的微量真菌元素,或者由于不活跃的螺旋状真菌元素,在显微镜下无法视化。 (30)。在本研究中, 特里乔菲顿 占离子体的77.14%,其次是: 蜘蛛侠 (8.57%)和 微粒 (14.28%). 最孤独的是 三合金卢布 (36.19%),其次是 三毛毛蕨 (15.23%) 三磷基ton (13.33%)紫罗兰 (12.38%), 微孢子罐头 (8.57%) (中文(简体) ). 其他被隔离的物种 显微镜,以及 爱比德莫菲顿软糖我们的调查结果符合Dhyaneswari GP等人的研究, (27) (单位:千美元)三合金卢布 59.6%, 三毛毛蕨 见Walke HR等人,26%。 (31) (单位:千美元)三合金卢布 56.37%, 三毛毛蕨 (19.39%),R.K Agarwal等人, (32) (单位:千美元)三合金卢布 42.63%, 三毛毛蕨 例如,Basak P等人, (26) 报告过脱氧植物 三合金卢布 作为主要的物种。 不过,有诸如Hemendra Kumar Sharma等人的研究, (25) 报告人 Trichophyton 门塔格罗树叶 作为最常见的物种隔离。

据报告,确定病毒内抗菌易感性对于消除致病性脱菌体的能力十分重要。 大多数临床类型的脱氧核糖核酸对热门抗风疗法反应良好,而Tinea unguium,Tinea capitis和大量类型的脱氧核糖核酸则需要系统治疗. 最近,抗风菌菌株抗菌菌种增多. 因此,及早启动正确的抗风治疗对于适当治疗和预防疾病传播至关重要。 在本研究中,使用基于agar的圆盘扩散方法进行抗肿瘤易感性测试 (12, 32) 用于五种抗菌药物:克托康纳az、氟化氮、伊特拉康纳ole和尼斯塔丁。 Itraconazole(76.19%)是最敏感的,其次是nystatin(63.8%)和ketoconazole(54.28%)和fluconazole(27.61%)是最敏感的。 目前的研究结论与Basak P等人的结论几乎相似。 (26) 苯丙胺酮(97.9%)是最敏感的抗风毒药物,而氟丙胺醇(2.7%)最不敏感。 我们关于脱氧基植物对氟甲酸的易感性的调查结果与Hemendra Kumar Sharma等人的研究是一致的。 (25)Basak P 等人, (26) EI 达马蒂等人 (33)氟丙烯对氟丙烯的抗药性较强,可能是由于药店供应氟丙烯,病人由于在柜台(OTC)供应量过大而自行用药,以及复合剂大量使用非理性处方。

在这项研究中,在105个隔离物中,80个(76.19%)对Itraconazole敏感,20.83%有抗药性. Itraconazole是一种价格高得多的抗风药. 根据Basak P等人的研究 (31) EI Damaty等人也将Itraconazole作为有效药物。 它能有效对抗脱马托生素;因此,它必须是一个优选的治疗方案,以使患有脱马托生素的病人取得更好的结果。 在这次研究中,在105个脱马托植物隔离物中,54.28%对Ketoconazole敏感,45.71%具有抗药性。 我们观测到对Ketoconazole的平均敏感性,这与Hemendra Kumar Sharma等人的研究一致,(25) 它建议将Ketoconazole作为处理脱马托植物病的一个平均选择。 我们的工作表明,磁盘扩散抗菌易感性测试是简单、廉价的,不需要昂贵的设备。 它可以对不同的抗风剂进行比较,并可能有助于优化治疗脱菌病患者的疗法.

结论

本报告记录了尼泊尔西部的脱氧核糖核酸及其制剂的出现和发生。 男性比女性更容易受到脱氧血球感染的影响. KOH考试显示比文化更敏感. 大部分案件是Tinea公司,其次是Tinea pedis和Tineacudi公司,以及最常见的神秘隔离。 特里乔菲顿 领先,其中最常见的物种是 三合金卢布与其它抗菌药物疗法相比,真菌感染可以通过适当剂量的伊特拉康阿佐尔治疗. MIC值应通过溴化物微稀释试验确定,以确定适当的剂量.

建议

目前的研究突出了三级护理医院的脱氧核糖核酸发病率,这也反映了我国其他地区的总体类似情况。 根据这项研究,它提出了以下建议: 任何临床诊断都需要实验室诊断的支持. 由于显微镜检查和文化易于进行,因此成本效益高,在所有疑似脱氧核糖核酸病例中都应这样做。 由于现在已有抗虫易感性检测设施可供脱菌体使用,因此每个隔离点都应该对抗虫药进行检测,以便降低脱菌体中抗药性。 这可能有助于对耐药菌株的监测和流行病学研究。

声明

作者贡献（CRediT）
所有作者对全部 14 项 CRediT 角色贡献均等（Conceptualization, Data curation, Formal analysis, Funding acquisition, Investigation, Methodology, Project administration, Resources, Software, Supervision, Validation, Visualization, Writing – original draft, Writing – review & editing）。
资助

Funding information was not reported in the published version of this article.

利益冲突
The authors declared no conflict of Interest in the present study.
伦理批准
Ethical approval was taken from the institutional review Committee (IRC) of UCMS-TH prior to the sample collection (I.R.C. Reg. No. UCMS/IRC /036/019). A total of 160 patients of all age group and both sexes attending Dermatology outpatient and clinically diagnosed with dermatophytosis were recruited in this study after informed consent.
数据可用性
A data availability statement was not reported in the published version of this article.

参考文献 (33)

33 条参考文献中有 17 条已链接 DOI。

  1. Reiss HE, Shadomy H, Lyon M. Mycoses of implantation. Fundamental medical mycology: Wiley-Blackwell, Hoboken; 2012. p. 479-92 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  2. Rippon JW. The changing epidemiology and emerging patterns of dermatophyte species. Current topics in medical mycology. 1985:208-34 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  3. Nenoff P, Krüger C, Ginter‐Hanselmayer G, Tietz HJ. Mycology–an update. Part 1: Dermatomycoses: causative agents, epidemiology and pathogenesis. JDDG: Journal der Deutschen Dermatologischen Gesellschaft. 2014;12(3):188-210 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  4. Suganthi M. Pathogenesis and clinical significance of dermatophytes: A comprehensive review. Innovations in Pharmaceuticals and Pharmacotherapy. 2017;5(1):62-70 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  5. Karim MT, Ghosh S, Chougale R, Vatkar V, Deshkar D, Narute J. Study of Dermatophytes and their Biofilm Production. Journal of Advanced Medical and Dental Sciences Research. 2017;5(11):56-9 PubMed Google Scholar
  6. Adimi P, Hashemi SJ, Mahmoudi M, Mirhendi H, Shidfar MR, Emmami M, et al. In-vitro activity of 10 antifungal agents against 320 dermatophyte strains using microdilution method in Tehran. Iranian journal of pharmaceutical research: IJPR. 2013;12(3):537 PubMed Google Scholar
  7. Hanafy AM. In vitro antifungal drug susceptibility of dermatophytes isolated from patients in Al-Medina, Saudi Arabia. Egypt J Exp Biol (Bot). 2012;8(2):245-50 PubMed Google Scholar
  8. De Sarro A, La Camera E, Fera M. New and investigational triazole agents for the treatment of invasive fungal infections. Journal of Chemotherapy. 2008;20(6):661-71 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  9. Pakshir K, BAHA AL, Rezaei Z, Sodaifi M, Zomorodian K. In vitro activity of six antifungal drugs against clinically important dermatophytes. 2009 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  10. Azambuja CVdA, Pimmel LA, Klafke GB, Xavier MO. Onychomycosis: clinical, mycological and in vitro susceptibility testing of isolates of Trichophyton rubrum. Anais brasileiros de dermatologia. 2014;89(4):581-6 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  11. Jha B, Mahadevamurthy S, Sudisha J, Bora A. Isolation, identification and antifungal susceptibility test of dermato phytes from the patients with onychomycosis in central Nepal. Am J Dermatol Venereol. 2015;4(3):30-6 PubMed Google Scholar
  12. Nweze E, Mukherjee P, Ghannoum M. Agar-based disk diffusion assay for susceptibility testing of dermatophytes. Journal of clinical microbiology. 2010;48(10):3750-2 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  13. Agarwal R, Gupta S, Mittal G, Khan F, Roy S, Agarwal A. Antifungal susceptibility testing of dermatophytes by agar-based disk diffusion method. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2015;4(3):430-6 PubMed Google Scholar
  14. Rippon JW. Medical mycology; the pathogenic fungi and the pathogenic actinomycetes: Eastbourne, UK; WB Saunders Company; 1982 PubMed Google Scholar
  15. Khatri PK, Kachhawa D, Maurya V, Meena S, Bora A, Rathore L, et al. Antifungal resistance pattern among dermatophytes in Western Rajasthan. Int J Curr Microbiol App Sci. 2017;6: 499-509 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  16. Indira G. In vitro antifungal susceptibility testing of 5 antifungal agents against dermatophytic species by CLSI (M38-A) micro dilution method. Clin Microbial. 2014;3(3) DOI Crossref PubMed Google Scholar
  17. Tartor YH, Abo Hashem ME, Enany S. Towards a rapid identification and a novel proteomic analysis for dermatophytes from human and animal dermatophytosis. Mycoses. 2019;62(12):1116-26 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  18. Janagond AB, Rajendran T, Acharya S, Vithiya G, Ramesh A, Charles J. Spectrum of dermatophytes causing tinea corporis and possible risk factors in rural patients of madurai region, South India. Natl J Lab Med. 2016;5 PubMed Google Scholar
  19. Ramaraj V, Vijayaraman RS, Rangarajan S, Kindo AJ. Incidence and prevalence of dermatophytosis in and around Chennai, Tamilnadu, India. Int J Res Med Sci. 2016;4(3):695-700 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  20. Janardhan B, Vani G. Clinico mycological study of dermatophytosis. Int J Res Med Sci. 2017;5(1):31-9 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  21. Verenkar M, Pinto M, Rodrigues S, Roque W, Singh I. Clinico-microbiological study of dermatophytoses. Indian journal of pathology & microbiology. 1991;34(3):186-92 PubMed Google Scholar
  22. Sumathi S, Mariraj J, Shafiyabi S, Ramesh R, Krishna S. Clinicomycological study of dermatophytes. Int J Pharm Biomed Res. 2013;4(2):132-4 PubMed Google Scholar
  23. Gupta B, Kumar S, Kumar R, Khurana S. Mycological aspects of dermatomycosis in Ludhiana. Indian Journal of Pathology & Microbiology. 1993;36(3):233-7 PubMed Google Scholar
  24. Balakumar S, Rajan S, Thirunalasundari T, Jeeva S. Epidemiology of dermatophytosis in and around Tiruchirapalli, Tamilnadu, India. Asian Pacific Journal of Tropical Disease. 2012;2(4):286-9 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  25. Hemendra Kumar Sharma NV. In vitro antifungal Susceptibility testing of Dermatophytes isolated from clinical samples in tertiary care hospital around Jaipur, Rajasthan. International journal of medical and health research. 2019(3):40-5 PubMed Google Scholar
  26. Priyam Basak BM, Swetalona Pattanaik. Prevalence of dermatophytic infections including antifungal susceptibility pattern of dermatophytes in a tertiary care hospita. International Journal of Research in Medical Sciences 2019: 699-705 DOI Crossref PubMed Google Scholar
  27. Dhyaneswari GP MV, Bhore AV. Clinicomycological profile of dermatophytosis in a tertiary care hospital in Western India. SAS J Med. 2015;1(4):160-5 PubMed Google Scholar
  28. Mahale RP RM, Tejashree A, Deepashree R, Kulkarni M. Clinicomycological profile of dermatophytosis in a teaching hospital. Int J Pharmaceut Sci Invent. 2014;3(8):43-6 PubMed Google Scholar
  29. Lavanya V SS. Clinico-mycological study of Dermatophytosis in a tertiary care centre in Bagalkot. Int J Med Health Res. 2015;1(2):63-6 Dermatophytosis Karn et al. PubMed Google Scholar
  30. Lyngdoh CJ, Lyngdoh WV, Choudhury B, Sangma KA, Bora I, Khyriem AB. Clinico-mycological profile of dermatophytosis in Meghalaya. International Journal of Medicine and Public Health. 2013;3(4) DOI Crossref PubMed Google Scholar
  31. Walke HR, Gaikwad AA, Palekar SS. Clinico-mycological profile of dermatophytosis in patients attending dermatology OPD in tertiary care hospital, India. Int J Curr Microbiol App Sci. 2014;3(10):432-40 PubMed Google Scholar
  32. Agarwal R, Gupta S, Mittal G, Khan F, Roy S, Agarwal A. Antifungal susceptibility testing of dermatophytes by agar-based disk diffusion method. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2015;4:430-6 PubMed Google Scholar
  33. El Damaty HM, Tartor YH, Mahmmod YS. Species identification, strain differentiation, and antifungal susceptibility of dermatophyte species isolated from clinically infected Arabian horses. Journal of Equine Veterinary Science. 2017;59:26-33 DOI Crossref PubMed Google Scholar

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如何引用本文

Karn SL, Gurung A, Shrivastava AK, Poudel SK, Adhikari SR, Sah CM. Dermatophytosis in Bhairahawa, Nepal: Prevalence and Resistance Pattern of Dermatophyte Species. Ulutas Med J. 2021;7(2):115-123. doi:10.5455/umj.20201208055254

Karn, S. L., Gurung, A., Shrivastava, A. K., Poudel, S. K., Adhikari, S. R., & Sah, C. M. (2021). Dermatophytosis in Bhairahawa, Nepal: Prevalence and Resistance Pattern of Dermatophyte Species. The Ulutas Medical Journal, 7(2), 115–123. https://doi.org/10.5455/umj.20201208055254

Karn, S.L. et al. (2021) 'Dermatophytosis in Bhairahawa, Nepal: Prevalence and Resistance Pattern of Dermatophyte Species', The Ulutas Medical Journal, 7(2), pp. 115–123. doi: 10.5455/umj.20201208055254.

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